Preview

Хирургия и онкология

Расширенный поиск

Клиническое значение экспрессии мРНК сурвивина (BIRC5) при колоректальном раке

https://doi.org/10.17650/2949-5857-2023-13-4-17-37

Аннотация

Цель исследования – оценка клинической значимости экспрессии мРНК сурвивина (BIRC5) в циркулирующих опухолевых клетках (ЦОК) и опухолевом материале при колоректальном раке (КРР).

Материалы и методы. Исследование было организовано по принципу сплошного проспективного нерандомизированного исследования. Определение экспрессии мРНК сурвивина (BIRC5) в ЦОК и опухолевом материале произведено при помощи полимеразной цепной реакции в реальном времени.

Результаты. В исследование включено 130 пациентов: группа исследования – 109 пациентов с КРР, группа наблюдения – 21 пациент с аденомами толстой кишки. Всем пациентам выполнено полное удаление опухоли: радикальные операции – 93,6 %, циторедуктивные – 6,4 %. Выявлен высокий уровень экспрессии мРНК сурвивина (BIRC5) в колоректальной аденокарциноме в сравнении с аденомами (pMann–whitney < 0,001) M ± SD (1,678 ± 2,45 и 0,023 ± 0,07).

В группах исследования и наблюдения экспрессия мРНК сурвивина (BIRC5) в ЦОК как до операции M ± SD (1,175 ± 1,33 и 0,052 ± 0,11), так и через 3 мес M ± SD (1,015 ± 0,93 и 0,018 ± 0,002) значимо отличалась (pMann–whitney < 0,001). При проведении адъювантной химиотерапии отмечалось снижение уровня экспрессии сурвивина в ЦОК (p р = 0,015 и р = 0,012). Гиперэкспрессия сурвивина в ЦОК до операции коррелирует с поражением регионарных лимфатических узлов (p = 0,03, r = 0,21), стадией опухолевого процесса (р = 0,01, r = 0,25), степенью дифференцировки опухоли (р = 0,03, r = 0,21). Гиперэкспрессия сурвивина в ЦОК через 9 мес после операции значимо влияет на безрецидивную выживаемость, отношение рисков (ОР) (95 % доверительный интервал (ДИ): ОР 3,1 (95 % ДИ 1,56–6,08, p = 0,0012) и общую выживаемость пациентов: Op 6,8 (95 % ДИ 2,65–17,33, p = 0,0001).

Выводы. Гиперэкспрессия мРНК сурвивина при КРР является негативным фактором прогноза заболевания, напрямую зависит от опухолевого поражения регионарных лимфатических узлов, стадии заболевания, степени дифференцировки опухоли, способствует развитию рецидива заболевания, и может использоваться для диагностики минимальной остаточной болезни и оценки прогноза общей выживаемости пациентов.

Об авторах

Андрей В. Орехва
Учреждение здравоохранения «Витебский областной клинический онкологический диспансер»; Учреждение образования «Витебский государственный ордена Дружбы народов медицинский университет»
Беларусь

Андрей Владимирович Орехва

210038 Витебск, ул. П. Бровки, 33;

210009 Витебск, пр-кт Фрунзе, 27



Е. А. Шляхтунов
Учреждение образования «Витебский государственный ордена Дружбы народов медицинский университет»
Беларусь

210009 Витебск, пр-кт Фрунзе, 27



В. М. Семенов
Учреждение образования «Витебский государственный ордена Дружбы народов медицинский университет»
Беларусь

210009 Витебск, пр-кт Фрунзе, 27



И. В. Жильцов
Учреждение образования «Витебский государственный ордена Дружбы народов медицинский университет»
Беларусь

210009 Витебск, пр-кт Фрунзе, 27



А. В. Ерушевич
Учреждение здравоохранения «Витебский областной клинический онкологический диспансер»
Беларусь

210038 Витебск, ул. П. Бровки, 33



Г. М. Шаппо
Учреждение образования «Витебский государственный ордена Дружбы народов медицинский университет»
Беларусь

210009 Витебск, пр-кт Фрунзе, 27



Я. Н. Лях
Учреждение здравоохранения «Витебский областной клинический онкологический диспансер»
Беларусь

210038 Витебск, ул. П. Бровки, 33



Алина В. Орехва
учреждение здравоохранения «Витебский областной клинический диагностический центр»
Беларусь

210023 Витебск, 1-я ул. Доватора, 2



Список литературы

1. Bettegowda C., Sausen M., Leary R.J. et al. Detection of circulating tumor DNA in early- and late-stage human malignancies. Sci Transl Med 2014;6(224):224ra24. DOI: 10.1126/scitranslmed.3007094

2. Tie J., Wang Y., Tomasetti C. et al. Circulating tumor DNA analysis detects minimal residual disease and predicts recurrence in patients with stage II colon cancer. Sci Transl Med 2016;8(346):346ra92. DOI: 10.1126/scitranslmed.aaf6219

3. Tarazona N., Gimeno-Valiente F., Gambardella V. et al. Targeted next-generation sequencing of circulating-tumor DNA for tracking minimal residual disease in localized colon cancer. Ann Oncol 2019;30(11):1804–12. DOI: 10.1093/annonc/mdz390

4. Tan Y., Wu H. The significant prognostic value of circulating tumor cells in colorectal cancer: A systematic review and meta-analysis. Curr Probl Cancer 2018;42(1):95–106. DOI: 10.1016/j.currproblcancer.2017.11.002

5. Alberter B., Klein Ch.A., Polzer B. Single-cell analysis of CTCs with diagnostic precision: opportunities and challenges for personalized medicine. Expert Rev Mol Diagn 2016:16(1):25–38. DOI: 10.1586/14737159.2016.1121099

6. Marcuello M., Vymetalkova V., Neves R.P. et al. Circulating biomarkers for early detection and clinical management of colorectal cancer. Mol Aspects Med 2019;69:107–22. DOI: 10.1016/j.mam.2019.06.002

7. Andersen M.H., Svane I.M., Becker J.C. et al. The universal character of the tumor-associated antigen survivin. Clin Cancer Res 2007;13(20):5991–4. DOI: 10.1158/1078-0432.CCR-07-0686

8. Shintani M., Sangawa A., Yamao N. et al. Immunohistochemical expression of nuclear and cytoplasmic survivin in gastrointestinal carcinoma. Int J Clin Exp Pathol 2013;6(12):2919–27.

9. Choi J., Chang H. The expression of MAGE and SSX, and correlation of COX2, VEGF, and survivin in colorectal cancer. Anticancer Res 2012;32(2):559–64.

10. Miura K., Fujibuchi W., Ishida K. et al. Inhibitor of apoptosis protein family as diagnostic markers and therapeutic targets of colorectal cancer. Surg Today 2011;41(2):175–82. DOI: 10.1007/s00595-010-4390-1

11. Qi G., Tuncel H., Aoki E. et al. Intracellular localization of survivin determines biological behavior in colorectal cancer. Oncol Rep 2009;22(3):557–62. DOI: 10.3892/or_00000471

12. Okada E., Murai Y., Matsui K. et al. Survivin expression in tumor cell nuclei is predictive of a favorable prognosis in gastric cancer patients. Cancer Lett 2001;163(1):109–16. DOI: 10.1016/s0304-3835(00)00677-7

13. Jakubowska K., Pryczynicz A., Dymicka-Piekarska V. et al. Immunohistochemical expression and serum level of survivin protein in colorectal cancer patients. Oncol Lett 2016;12(5):3591–97. DOI: 10.3892/ol.2016.5075

14. Devetzi M., Kosmidou V., Vlassi M. et al. Death receptor 5 (DR5) and a 5-gene apoptotic biomarker panel with significant differential diagnostic potential in colorectal cancer. Sci Rep 2016;6:36532. DOI: 10.1038/srep36532

15. Kim J., Ahn S., Kim K. et al. Prognostic significance of survivin expression and combined analysis with cancer stem cell and epithelial-mesenchymal transition-related markers in patients with rectal cancer undergoing preoperative chemoradiotherapy. Anticancer Res 2018;38(12):6881–9. DOI: 10.21873/anticanres.13064л

16. Krieg A., Werner T.A., Verde P.E. et al. Prognostic and clinicopathological significance of survivin in colorectal cancer: a meta-analysis. PLoS One 2013;8(6):e65338. DOI: 10.1371/journal.pone.0065338

17. Huang Y.J., Qi W.X., He A.N. et al. The prognostic value of survivin expression in patients with colorectal carcinoma: a meta-analysis. Jpn J Clin Oncol 2013;43(10):988–95. DOI: 10.1093/jjco/hyt103


Рецензия

Просмотров: 263


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2949-5857 (Online)